Efeito inibitório de DMSO, Tween 80 e Triton X-100 sobre Agaricus bisporus e Lecanicillium fungicola
Palavras-chave:
DMSO, Triton x-100, Tween 80, doença da bolha seca, champignon, MEV.Resumo
Os surfactantes são substâncias muito utilizadas no preparo de suspensões de esporos, em especial, de fungos ascomicetos. Dentre esses estudos, estão aqueles que avaliam o uso de compostos antifúngicos. Entretanto, esses compostos, além de bons dispersantes, podem apresentar também um efeito inibitório sinérgico ou adicional ao efeito dos antifúngicos testados sobre a germinação dos esporos ou sobre o crescimento micelial. Por isso, é vital que se avalie esse tipo de efeito antes da sua utilização neste tipo de ensaio. O fungo Lecanicillium fungicola é o agente causador da doença da bolha seca, que acomete o cultivo do cogumelo Agaricus bisporus. Além do preparo da suspensão de esporos, os surfactantes são utilizados na solubilização ou preparo de emulsões de óleos essenciais testados no controle de L. fungicola. O objetivo desse estudo foi avaliar a influência do DMSO (solvente e surfactante fraco) e dois surfactantes (Tween 80 e Triton X-100) nas concentrações de 0,5 e 1%, sobre o crescimento micelial de L. fungicola e A. bisporus. Para DMSO, não se observou alterações visuais nas colônias para as duas espécies. Tween 80 afetou o crescimento micelial, fazendo com que as colônias crescessem menos, quando comparadas com o controle, além de alterar o aspecto da colônia para ambas as espécies. Triton X-100 apresentou efeito inibitório ainda maior sobre o crescimento das duas espécies fúngicas, afetando consideravelmente tanto o tamanho como a morfologia da colônia. Análises de microscopia eletrônica de varredura permitiram observar que os surfactantes alteraram as estruturas e os aspectos das hifas de ambos os fungos e no caso do L. fungicola também afetam a quantidade e aspecto dos esporos.
Referências
Ball, S. R., Kwan, A. H., & Sunde, M. (2020). Hydrophobin rodlets on the fungal cell wall. In Current Topics in Microbiology and Immunology, 425, 29–51. Springer Science and Business Media Deutschland GmbH. https://doi.org/10.1007/82_2019_186
Berendsen, R. L., Kalkhove, S. I. C., Lugones, L. G., Baars, J. J. P., Wösten, H. A. B., & Bakker, P. A. H. M. (2012). Effects of fluorescent Pseudomonas spp. isolated from mushroom cultures on Lecanicillium fungicola. Biological Control, 63(2), 210–221. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2012.07.012
Bozzola, J. J., & Russell, L. D. (1999). Electron microscopy: principles and techniques for biologists. Jones & Bartlett Learning.
Brayton, C. F. (1986). Dimethyl sulfoxide (DMSO): a review. In The Cornell veterinarian 76 (1), 61–90.
Silva, B. D., Rosario, D. K. A. D., & Conte-Junior, C. A. (2022). Can droplet size influence antibacterial activity in ultrasound-prepared essential oil nanoemulsions?. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 1-11. https://doi.org/10.1080/10408398.2022.2103089
Silva, J. D. F., Da Silva, Y. P., Piatnicki, C. M. S., Böckel, W. J., & Mendonça, C. R. B. (2015). Microemulsões: Componentes, características, potencialidades em química de alimentos e outras aplicações. In Quimica Nova 38 (9), 1196–1206. Sociedade Brasileira de Quimica. https://doi.org/10.5935/0100-4042.20150135
de Billerbeck, V. G., Roques, C. G., Bessière, J. M., Fonvieille, J. L., & Dargent, R. (2001). Effects of Cymbopogon nardus (L.) W. Watson essential oil on the growth and morphogenesis of Aspergillus niger. Canadian Journal of Microbiology, 47(1), 9–17. https://doi.org/10.1139/cjm-47-1-9
Deacon, J. W., & Berry, L. A. (2013). pathogens and the ecological factors that influence their activities. Sev-eral themes have begun to emerge from these studies, and they show parallels. Biological Control of Plant Diseases: Progress and Challenges for the Future, 230, 157.
Diánez, F., Santos, M., Parra, C., Navarro, M. J., Blanco, R., & Gea, F. J. (2018). Screening of antifungal activity of 12 essential oils against eight pathogenic fungi of vegetables and mushroom. Letters in Applied Microbiology, 67(4), 400–410. https://doi.org/10.1111/lam.13053
Garon, D., Krivobok, S., Wouessidjewe, D., & Seigle-Murandi, F. (2002). Influence of surfactants on solubilization and fungal degradation of fluorene. Chemosphere, 47(3), 303–309. https://doi.org/10.1016/S0045-6535(01)00299-5
Hamzah, N., Singhal, N., Padhye, L., & Swift, S. (2018). Effect of surfactants on Aspergillus brasiliensis ATCC 16404 physicochemical properties. Journal of Environmental Chemical Engineering, 6(2), 3392–3398. https://doi.org/10.1016/j.jece.2018.04.068
Hari, M., Joseph, S. A., Mathew, S., Nithyaja, B., Nampoori, V. P. N., & Radhakrishnan, P. (2013). Thermal diffusivity of nanofluids composed of rod-shaped silver nanoparticles. International Journal of Thermal Sciences, 64, 188–194. https://doi.org/10.1016/j.ijthermalsci.2012.08.011
Koley, D., & Bard, A. J. (2010). Triton X-100 concentration effects on membrane permeability of a single HeLa cell by scanning electrochemical microscopy (SECM). Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 107(39), 16783–16787. https://doi.org/10.1073/pnas.1011614107
Largeteau, M. L., & Savoie, J. M. (2010). Microbially induced diseases of Agaricus bisporus: Biochemical mechanisms and impact on commercial mushroom production. Applied Microbiology and Biotechnology, 86(1), 63–73. https://doi.org/10.1007/s00253-010-2445-2
Lee, L. T., Costa, L. M. A. S., Moraes, T. S. J. de, Castro, C. P. de, Souza, L. de C., Piccoli, R. H., & Dias, E. S. (2020). Screening de óleos essenciais contra Lecanicillium fungicola. Research, Society and Development, 9(9), e269997098. https://doi.org/10.33448/rsd-v9i9.7098
Manikantan, H., & Squires, T. M. (2020). Surfactant dynamics : hidden variables controlling fluid flows. Journal of Fluid Mechanics, 892, 1–115. https://doi.org/https://doi.org/10.1017/jfm.2020.170
Mattei, B., Lira, R. B., Perez, K. R., & Riske, K. A. (2017). Membrane permeabilization induced by Triton X-100: The role of membrane phase state and edge tension. Chemistry and Physics of Lipids, 202, 28–37. https://doi.org/10.1016/j.chemphyslip.2016.11.009
Mwamburi, L. A., Laing, M. D., & Miller, R. M. (2015). Effect of surfactants and temperature on germination and vegetative growth of beauveria bassiana. Brazilian Journal of Microbiology, 46(1), 67–74. https://doi.org/10.1590/S1517-838246120131077
Nakama, Y. (2017). Surfactants. In Cosmetic Science and Technology: Theoretical Principles and Applications (pp. 231–244). Elsevier Inc. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-802005-0.00015-X
Nielsen, C. K., Kjems, J., Mygind, T., Snabe, T., & Meyer, R. L. (2016). Effects of Tween 80 on Growth and Biofilm Formation in Laboratory Media. Frontiers in Microbiology, 7(12), 1878. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.01878
Papich, M. G. (2016). Dimethyl Sulfoxide (DMSO). In Saunders Handbook of Veterinary Drugs (pp. 248–249). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-24485-5.00215-1
Randhawa, M. A. (2006). The Effect of Dimethyl Sulfoxide DMSO on the Growth of Dermatophytes. Nippon Ishinkin Gakkai Zasshi, 47, 313–318. https://doi.org/https://doi.org/10.3314/jjmm.47.313
Reese, E. T., & Maguire, A. (1969). Surfactants as stimulants of enzyme production by microorganisms. Applied Microbiology, 17(2), 242–245.
Regnier, T., & Combrinck, S. (2010). In vitro and in vivo screening of essential oils for the control of wet bubble disease of Agaricus bisporus. South African Journal of Botany, 76(4), 681–685. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2010.07.018
Rokni, N., & Goltapeh, E. M. (2019). Tolerance to dry bubble disease (Lecanicillium fungicola) in Iranian wild germplasm of button mushroom (Agaricus bisporus). Mycoscience, 60(2), 125–131. https://doi.org/10.1016/j.myc.2018.10.001
Swanson, B. N. (1985). Medical use of dimethyl sulfoxide (DMSO). In Reviews in Clinical and Basic Pharmacology, 5 (1–2), 1–33.
Zeng, G. M., Shi, J. G., Yuan, X. Z., Liu, J., Zhang, Z. B., Huang, G. H., Li, J. B., Xi, B. D., & Liu, H. L. (2006). Effects of Tween 80 and rhamnolipid on the extracellular enzymes of Penicillium simplicissimum isolated from compost. Enzyme and Microbial Technology, 39(7), 1451–1456. https://doi.org/10.1016/j.enzmictec.2006.03.035
Downloads
Publicado
Edição
Seção
Licença
Material protegido por direitos autorais e plágio. No caso de material com direitos autorais ser reproduzido no manuscrito, a atribuição integral deve ser informada no texto. Caso seja preciso, um documento comprobatório de autorização deve ser enviado para a Comissão Editorial como documento suplementar. É da responsabilidade dos autores, não Revista ou dos editores ou revisores, informar, no artigo, a autoria de textos, dados, figuras, imagens e/ou mapas publicados anteriormente em outro lugar.
Se existir alguma suspeita sobre a originalidade do material, a Comissão Editorial pode verificar o manuscrito por plágio. Nos casos em que o plágio for confirmado, o manuscrito será devolvido sem revisão adicional e sem a possibilidade de re-submissão. Auto-plágio (ou seja, o uso de frases idênticas de documentos publicados anteriormente pelo mesmo autor) também não é aceitável.
O (s) autor (es) no ato da submissão do manuscrito deverão assinar um acordo prévio concordando acerca da Declaração de Direito Autoral, explanada no parágrafo acima. Para reforçar os direitos autorais do autor, a Revista Brasileira de Meio Ambiente utiliza a licença Creative Commons - CC-BY 4.0 [Os artigos podem ser compartilhados e seus assuntos podem ser modificados, desde que o devido crédito seja aplicado de forma integral] (para mais informações sobre a licença, (https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0), no qual, a logomarca e o link fica de modo estático no rodapé da revista. Vale ressaltar que o(s) autor (es) podem solicitar os direitos autorais do manuscrito sem restrições, mesmo que o artigo já esteja publicado na revista.
